尾静脉很难打？其实是你忽略了这几点（内附独家视频）

导读

实验动物中采用的给药方法众多，根据药物性质和实验目的不同，需要采用不同的给药方式，如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药，在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大，却也是我们不可或缺的实验技能。今天，就和大家分享下尾静脉注射的技巧。

本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术深度分析与拓展，涵盖几种小鼠品系的尾静脉注射技巧，并附有专业视频分析，非常值得大家阅读哦！

Part Ⅰ   实验基本步骤

1. 准备工作 （1ml注射器，酒精棉球，小鼠固定器）如下图：

2. 小鼠的固定  （3种方式）

尾静脉注射时需要把小鼠固定，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，露出尾巴即可。最好使用小鼠固定器，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间，防止注射时乱动。

然而我们却总是面临小鼠固定器损坏或丢失的情况，或者有的同学压根嫌弃固定器，觉得安装起来太麻烦，这里分享给大家2个替补的好方案，简单快捷。

笼盖压尾法：动物笼盖子露出尾巴，注射时最好让人帮你扶住笼子，固定住小鼠。

离心管固鼠法： 用手边50ml离心管，底部开若干小口便于小鼠呼吸，然后把盖子戳一个洞，拉出鼠尾，为了让小鼠顺利进入离心管，可用黑布包裹试管，注射时用胶带把离心管固定在实验台上。

3. 找准尾静脉，并扩张血管

相信有一个困惑很多人的问题，尾静脉到底是哪条？这么细小，能扎进去吗？

首先，想找准小鼠静脉血管，必须了解尾静脉组成。结合下图所示：

一般来讲，小鼠尾部有3条静脉，位于背侧和左右两侧，由于背部静脉较深且细，一般选择左右两侧尾静脉进行注射；另外1条动脉，位于腹侧。

第二步：扩张静脉血管（3种途径）

鉴于小鼠尾静脉细小并且不明显，所以在注射之前需要将血管扩张，便于注射。

① 可以将小鼠尾部在45~50℃左右温水浸浴2min，以扩张静脉；

② 用酒精擦拭血管，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质；

③ 利用红外线烤灯加热鼠尾3-5min，使静脉充盈。

4. 注射（最关键最困难部分）

当我们准备好注射药物，找准尾静脉固定后，就开始进行注射了。具体步骤如下：

①左手固定鼠尾，右手持注射器，第一次注射从距尾尖2~3cm处（1/3处）进针。在这进针的原因有2个：此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易；而且一旦注射不成功，再次注射时有更多近端注射的余地；

②右手进针时针头与桌面平行，一旦进入，将针头稍稍上挑；

③待针头进入血管后见回血，立即注射，注射时可明显地感觉到针行通畅，毫无阻力，代表注射成功；若针头不在静脉血管中，手感针行有阻力，注射失败；

④注射完毕后，为了避免药物流出，针头缓慢旋转抽出；

⑤注射后小鼠伤口处理，用纱布或者酒精棉球按压伤口，直到不出血为止，一般3-5min，这样有利于创口尽快恢复，以利于下次注射。

注意事项：

① 进针时不要太深，针头入血管后马上把针头略往上，平行进针；

② 注射时如果阻力较大，甚至出现渗液，则说明不在静脉内，需要拔出再次注射；

③注射时推液时不要过快，平缓注射；

④注射器吸入药液后，务必一定要将空气推出，防止因空气进入心脏，造成小鼠死亡，切记：不可注射含有空气的液体。

便于更好理解，以裸鼠和小白鼠为例，请大家花1min时间，观看下面视频：

https://v.qq.com/txp/iframe/player.html?vid=x0395gqs2tf&width=500&height=375&auto=0

Part Ⅱ   技术深度分析与拓展

1. 注射成功案例分析

结合上面动图，我们可以看到注射成功的特点：

① 进针时，针头可见少量回血，代表注射到静脉

② 注射到静脉，推液几乎没有阻力

③ 随着药液推进，能清晰看到液体在血管流动

④ 拔针时，伤口处会有少量血液和药液的混合物

如下图为注射成功后的尾巴：伤口处会有少量血液和药液的混合物

2. 注射失败案例分析

结合上面动图，我们可以看到注射失败的特点：

① 如果注射到静脉以外，强行推液，阻力较大

② 注射时，液体无法进入从而导致血管变白

③ 出针后，对于有大量血或者药液大量渗出

④ 由于失败后尾部会有淤血，尾巴颜色变暗并肿胀

如下图为注射失败的尾巴：有大量血液和药液的混合液渗出

3. 不同品系的小鼠如何对待

不同品系的小鼠尾静脉的组成几乎是一样的，只是不同品系和肤色的小鼠尾巴的识别度不一样，所以我们需要区别对待。

① 裸鼠（注射最简单）尾巴如下图：

因为裸鼠的静脉血管呈扁平状且细小，但特别容易识别，因此在各类小鼠品系中注射最简单；按上述操作即可。

② 小白鼠 （注射比较简单）尾巴如下图：

一般小白鼠的静脉血管在酒精擦拭后，比较清晰可见，注射时比较简单。

③ 小黑鼠（注射最难）尾巴如下图：

小黑鼠的血管不易辨别，所以需要红外灯等外界条件辅助下，充分刺激后使其血管尽量扩张，便于识别；另外尾巴皮肤较硬，适当控制力度。

4. 静脉注射物为：细胞系、病毒、细菌时等如何处理？

尾静脉注射除了作为一种常见的给药方式，也有很多其他应用。如全身性的白血病模型、小鼠乳腺癌肺部转移模型，均需要将肿瘤细胞利用尾静脉方式注射。例如还有模拟其他细菌、病毒等感染模型，也常需要尾静脉注射。

注射手法和药物注射基本一样，但还是需要注意一下几点！

① 相比药液，注射的细胞更加粘稠，所以一定要均匀稀释后，吸入注射器；

②确认静脉血管后，由于细胞，细菌及病毒等对小鼠身体伤害大，一定缓慢注射，过快会造成小鼠休克，严重的话会造成小鼠死亡；

③ 注射大量细胞或者病毒后，小鼠会变得虚弱，体温变凉，需放置于37℃的恒温平台上；

④ 肿瘤细胞、病毒及细菌等注射时，一定要做好防护工作，避免液体溅出，造成自身伤害。

5. 对于SD大鼠的注射

基本操作步骤和小鼠差不多，重点是在于：

① 老鼠个体大，一定要固定好保证一定不能乱动；

② 充分暴露尾静脉，可以拿温水多泡或者酒精多擦试几次。

看了咱们这篇图文并茂的文章，有没有觉得尾静脉注射并不难呢，牢记文章所说的几点实验技巧，并且心平气和地地多加练习，相信你一定可以完成。当然了，如果你的实践操作中有任何难题，可以给我们留言，我们尽力帮你解答。

精彩内容列表（持续更新）

模式动物系列（—）小鼠基本信息

1.7 尾静脉注射实验技巧

2. 模式动物系列（二）基因编辑鼠

3. 模式动物系列（三）疾病动物模型

4.  实践中的实验动物福利和伦理

5. 小鼠命名规则

6. 代谢综合征动物模型

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